授课教师：193523,193556,193557,213501,213572,213573,213575

总学时：18

课程教材：

先修课程：

主要参考书目：

1.Basic Cell Culture Protocols；2.Budding Yeast: A Laboratory Manual (edited by Brenda Andrews; Charles Boone; Trisha N. Davis; Stanley Fields)；3.《医学实验动物学》；4.Introduction to Genomics (3nd edition), Arthur M. Lesk，‎ Oxford University Press；5. 基因组学（第4版），杨金水，高等教育出版社。6. Introduction to Flow cytometry

课程内容简介（中文）：1.基础及临床研究技术入门总论：向同学们介绍什么是基础研究及临床试验，揭示基础研究及临床试验的重要性及目的，介绍相应科学研究所需的基础实验技术如定量PCR、免疫共沉淀等及展现形式；2.介绍细胞免疫学基础知识以及检测免疫细胞的重要技术手段流式细胞技术仪的理论及操作；3.概述组织细胞培养技术的理论和方法。组织细胞培养技术是研究组织和细胞的技术方法，被培养的组织和细胞也是实验研究的对象。本课程概要地介绍组织和细胞培养技术有关的概念、基本原理、操作程序和关键技术，及其在医学研究和临床实践中的应用，该领域的研究历史和最新发展动态；患者来源异种移植技术的概念、研究进展、技术方法、建立方法、应用及前景展望。目的使学生较为系统地掌握组织细胞培养的操作过程，了解各种操作的基本原理；有判定细胞生长好坏和是否发生污染的能力；熟悉体外培养细胞的生存条件、细胞的生物学性状和与此有关的基本理论知识，运用所学技术解决科研中的实际问题，提高学生综合分析问题，系统利用专业知识的综合素质。4.基于模式生物实验演化的理论：带领学生概览生物医学领域常用的模式生物及其在生物医学研究中的应用。 5.介绍组学实验设计及数据分析 –概览组学测定技术的主要种类及其在生物医学研究中的应用，覆盖基因组测序、转录组测序、蛋白质组测序、以及针对DNA、RNA、以及蛋白质的修饰组学测序。介绍组学测定技术相关实验的设计原则与注意事项，重点强调对照组设计和重复组设计的重要意义，解析个体差异及批次效应对实验结果的影响。向学生介绍组学主要组学测定技术的数据格式、分析路线及常用工具和数据库，并用实例展示的形势帮助学生将抽象的概念具像化，真正体会运用组学测定技术探索和回答生物医学问题的具体过程。6.介绍小鼠实验基础及人源化小鼠模型的建立及应用：通过视频及理论讲解，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法处死、大体解剖；介绍一些特殊小鼠操作方法，包括骨髓穿刺，骨髓注射，肝脏注射，眼眶注射，脾静脉注射，皮下成瘤、骨髓移植等操作方法；介绍人源化小鼠的发展及人源化小鼠的建立及应用现状。7.介绍荧光染色及荧光成像的化学及光学原理，以及组织和细胞的荧光成像和应用：通过视频及理论讲解，掌握荧光染色的基本流程和优化，包括一抗和二抗的选择，多通道成像荧光染料的选择，共聚焦显微镜的光波段的选择和扫描模式选择等。8.介绍临床研究的基本概念和研究方法-什么是临床试验，什么是回顾性研究，什么是队列研究。介绍每种临床研究基本的研究思路和研究方法，同时，授课教授会结合课题组发表的对应的文献，用实际的例子深入浅出讲述临床研究的意义方法。9.参观华南肿瘤重点实验室，了解基础科研日常流程，与研究生师兄师姐深入交流；举行理考试（开卷）+实验基本技能操作实践考核。

课程内容简介（英文）：